Investigación Científica

Los extractos vegetales evaluados corresponden a la siguiente descripción:

✅ Tintura Madre (TM): Corresponde a una tintura constituida por la mezcla de tres tinturas individuales, a saber: tintura de Baccharis articulata 40 % v/v; tintura de Rosmarinus officinalis 40 % v/v y tintura de Plantago major 20 % v/v. El contenido alcohólico de la tintura madre es de 50 %.

✅ Producto final 1 (PF1) u Green Sap: Corresponde auna dilución1/10 de la tintura madre en agua (tintura de Baccharis articulata 4 % v/v; tintura de Rosmarinus officinalis 4 % v/v , tintura de Plantago major 2 % v/v y contenido alcohólico de 5 % v/v).

✅ Producto final 3 (PF3): Corresponde auna dilución1/10 de la tintura madre, con un agregado de alcohol hasta una concentración final de 1 5 % v/v.

La línea empleada corresponde a un linfoma T murino, denominado BW5147, proveniente de un tumor espontáneo de ratones AKR/J adaptado a cultivo, originado en los Laboratorios Jackson, USA.El mismo es sensible a cortisol (10-6 M) y expresa el haplotipo H-2k y los siguientes marcadores: CD3+, receptor T ab y Thy 1.1, los que son rutinariamente chequeados por citometría de flujo con anticuerpos monoclonales específicos.

Las células BW5147 (3-5 X 105 cel/ml) se cultivaron en medio RPMI 1640 suplementado con 10% de suero fetal bovino y 2 mM de glutamina en presencia de los antibióticos penincilina (100U/ml) y estreptomicina (100µg/ml), en placas de 96 pocillos (volumen final 0.2 ml), encondiciones de esterilidad (flujo laminar, Steril Guard Hood class II, Type a/B3; marca: Baker Company, modelo: SG-400m), y en ambiente gaseado con 5% de CO2 (estufa gaseada de CO2; marca: Forma Scientific; modelo: 3111). Se realizaron cultivos con concentraciones crecientes de los extractos vegetales ya mencionados durante 24, 48 y 72 hs de incubación. Las células fueronpulsadas con 0.75 µCi/pocillo de [3H]TdR (S = 25 Ci/mmol) 16 hs antes del sacrificio de los cultivos (por congelación a -20 ºC). Los cultivos fueron posteriormente descongelados y filtrados por filtros de fibra de vidrio, Whatmann GF/A. La [3H]-TdRincorporada al ADN nuclear y retenida en dichos filtros se cuantificó por espectrometría de centelleo líquido empleando cocktails de centelleo comerciales. Los resultados (obtenidos en dpm) se expresaron como Porcentaje de Inhibición (% Inhib) considerando como 100% a las dpm obtenidas en ausencia de extracto y/o en presencia del vehículo.

La viabilidad celular a distintos tiempos en presencia o ausencia de TM y PF fue evaluada mediante conteo celular microscópico en cámara de Neubauer, empleando un colorante de exclusión, el Azul Tripán. Los % de Viabilidad correspondientes se calcularon teniendo en cuenta la cantidad de células vivas (que no incluyen el colorante de exclusión) con respecto al total de células (Vivas + Muertas, es decir aquellas células que incorporan el colorante y se ven de color azul a la observación microscópica).

Los resultados fueron analizados mediante el Test de Student y Análisis de Varianza seguida del test de Dunnetpara determinar las diferencias significativas entre grupos. Los valores se consideraron estadísticamente significativos cuando p £ 0.05.

Porcentaje de inhibición de la proliferación de células de linfoma T inducida por concentraciones crecientes de Green Sap, de su tintura madre y de PF3, a las 24 hs de cultivo.

a) Se emplearon diluciones correlativas de TM y PF de acuerdo a su proporción en la TM. El volumen total de la dilución de productos vegetales agregados fue de 0.02 ml, máximo volumen que puede ser agregado sin que diluya el aporte de nutrientes en el medio de cultivo. Cabe señalar que por este motivo no se pudo evaluar (N.D. = no determinado) la dilución de PF1 y PF3 (1/2.5) equivalente a la dilución 1/25 de TM.

b) Los porcentajes de inhibición fueron calculados considerando como 100% la radiactividad de [3H]-TdR incorporada en los cultivos basales (es decir, en ausencia de producto vegetal): 24024 ± 1206 dpm.Cabe señalar que la presencia de 1.5 y 2 % del vehículo alcohólico (contenido alcohólico de la dilución 1/25 del PF3 y de la TM respectivamente) estimula la proliferación celular en un 25 % aproximadamente. Todas las otras diluciones de extractos vegetales fueron realizadas manteniendo una concentración final constante de alcohol del 0.5% que no afectó la proliferación basal. Los resultados mostrados son el promedio ± E.S. de n=5 experimentos realizados por triplicado.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.01

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.05

.::. Acción dosis-respuesta de las tinturas individuales sobre la proliferación de las células BW5147 a las 24 hs de cultivo:

Efecto de concentraciones crecientes de las tinturas individuales sobre la proliferación de células BW5147

a) Cada extracto de tintura individual se diluyó en medio de cultivo conteniendo una concentración final de alcohol del 50% y en las mismas proporciones que las contenidas en la TM. En cada placa se realizó un control positivo correspondiente a la dilución 1/25 de TM con la que se obtuvo en todos los casos un% Inhib ³ 94%.

b) Los porcentajes de inhibición mostrados son la media ± ES de n=2 determinaciones realizadas por triplicado y fueron calculados como se explicó anteriormente.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.01

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.05

.::. Acción anti-proliferativa dosis-respuesta de los extractos vegetales sobre las células BW5147 a las 48 hs de cultivo:

Porcentaje de inhibición de la proliferación de células de linfoma T inducida por concentraciones crecientes de Green Sap, de su tintura madre y de PF3, a las 48 hs de cultivo

a) Se emplearon las diluciones correlativas de TM y PF tal como se describió en la Tabla 1.

b) Los porcentajes de inhibición fueron calculados tomando como 100% la radiactividad de [3H]-TdR incorporada en los cultivos basales: 32360 ± 1165 dpm.A las 48 hs de cultivo no se observaron diferencias significativas con 1.5% y 2 % del vehículo alcohólico (dilución 1/25 de PF3 y TM, respectivamente) respecto de la proliferación basal. Todas las otras diluciones de extractos vegetales fueron realizadas manteniendo una concentración final constante de alcohol del 0.5% que tampoco afectaron la proliferación basal. Los resultados mostrados son el promedio ± E.S. de n=5 experimentos realizados por triplicado.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.01.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.05

.::. Acción anti-proliferativa dosis-respuesta de los extractos vegetales sobre las células BW5147 a las 72 hs de cultivo:

Porcentaje de inhibición dosis-respuesta inducida por Green Sap, su tintura madre y PF3 sobre la proliferación de células de linfoma T a las 72 hs de cultivo.

a) Se emplearon las diluciones correlativas de TM y PF tal como se describió anteriormente.

b) Los porcentajes de inhibición fueron calculados tomando como 100% la radiactividad de [3H]-TdR incorporada en los cultivos basales: (16781 ± 1188) dpm. En todas las diluciones se mantuvo un 0.5% de contenido alcohólico que no modificó la proliferación basal. Los resultados mostrados son el promedio ± E.S. de n=5 experimentos realizados por triplicado.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.01.

.::. Difiere significativamente del basal con p £ 0.05

.::. Acción de los extractos vegetales sobre la viabilidad de células BW5147 a distintos tiempos de cultivo:

Efecto de TM y PF3 sobre la viabilidad de células en cultivos a los distintos tiempos de estudio

a) Los % de Viabilidad a cada tiempo (promedio ± ES de n=3 experimentos) se calcularon teniendo en cuenta la cantidad de células vivas (que no incluyen el colorante de exclusión Azul Tripán) con respecto al total de células (Vivas + muertas: células que incorporan el colorante y se ven de color azul a la observación microscópica). Los resultados se compararon con los valores promedios correspondientes a los basales y a las células incubadas por los mismos tiempos en medio con 0.5% de alcohol, los que se detallan a continuación:(95.3 ± 1.2) %, (94.0 ± 1.4) % y (94.3 ± 1.0)% a las 24, 48 y 72 hs, respectivamente.

.::. Difieren significativamente de los valores basales con p £ 0.01

.::. Difieren significativamente de los valores basales con p £ 0.05

Incremento del peso corporal

Animales controles: El incremento de peso guarda una relación exponencial con el tiempo post- inoculación. A medida que pasa el tiempo el peso se incrementasignificativamente hasta la mortalidad del 100 % de los animales.

Animales tratados: En este caso hay incremento y descenso del peso corporaldurante todo el tiempo que dura el tratamiento, prolongándose el tiempo desobrevida. Esto parecería ser compatible con el efecto citostático observado “ in vitro”. Merece destacarse que cuanto mayor es la dosis de PF3 menor es el incremento de peso observado, como ocurre con PF3 1/50 y PF3 1/200. Los animales que quedaron vivos hasta el día de la fecha presentan un incremento de peso del 0 %.

Mortalidad

En todos los casos, correspondientes a los tratados y controles hay mortalidad en función del tiempopost-inoculación.

Controles: Los porcentajes de mortalidad son mayores a tiempos cortos comparados con los tratados. Alcanzándose una mortalidad de un 100 %.

Tratados: Con la dosis terapéutica el mismo porcentaje de mortalidad observado con las otras dosis e incluso con los controles se produceen tiempos mas prolongados, indicando un mayor porcentaje de sobrevida de los animales. En los animales tratados la mortalidad no llegó al 100 %. Hasta el día de la fecha se mantienen vivos, 1 animal correspondiente a la dosis terapéutica, 2 de la dosis 1/200 y 1 de la dosis 1/50.

Tiempo de sobrevida de los animales controles y de los tratados con PF3.

Nota: Los valores de tiempo de sobrevida correspondientes adosis terapéutica, 1/200 y 1/50 podrían ser aún mayores ,ya queexisten animales vivos al día de la fecha: 1 de la dosis terapéutica, 2 de la dosis 1/200 y 1 animal correspondiente a la dosis 1/50. Estos valores se obtuvieronteniendo en cuenta la sobrevida hasta el 10 de febrero de 2005 (155 días post inoculación).